电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，在紫外灯下观察条带。

全能核酸酶（Benzonase Nuclease）是一种来源于粘质沙雷氏菌（Serratia marcescens）的基因工程核酸内切酶，能够高效降解所有形式的DNA和RNA，包括单链、双链、线状、环状和超螺旋结构。其纯度≥99%，并带有His-tag，便于纯化和检测。 特性与优势 广谱降解能力：全能核酸酶能够将DNA和RNA降解为2-5个碱基长度的5'-单磷酸寡核苷酸，且不具有碱基识别特异性。 高稳定性：在广泛的条件下（如6M尿素、0.1M盐酸胍、0.4% Triton X100、0.1% SDS、1 mM EDTA、1 mM PMSF等）仍保持高效活性。 无蛋白酶活性：不具有蛋白水解活性，不会对蛋白质样品造成损伤。 His-tag：带有His-tag的全能核酸酶便于通过金属螯合层析进行纯化和检测。 应用场景 去除核酸污染：在生物制药中，全能核酸酶可用于去除疫苗、蛋白或多糖类生物制品中的核酸残留，使核酸含量符合FDA和国内的要求。 降低样品粘度：在细胞裂解后，全能核酸酶能够降解核酸，减少溶液粘度，便于后续操作。 细胞培养产物纯化：降解核酸，避免核酸对细胞产物的影响，提高纯化效率。

在非洲猪瘟病毒（ASFV）检测中，该产品凭借其高灵敏度和防污染特性，能够快速、准确地检测低浓度病毒

λ核酸外切酶（Lambda Exonuclease）是一种来源于λ噬菌体的核酸外切酶，能够特异性地作用于双链DNA，沿5′→3′方向逐步去除5′端的单核苷酸。这种酶在分子生物学实验中具有广泛的应用。 工作原理 λ核酸外切酶的最适底物是5′端磷酸化的双链DNA。它能够高效地从5′端逐步降解双链DNA，生成单链DNA或单核苷酸。该酶对单链DNA和非磷酸化的双链DNA底物的降解效率较低，分别只有磷酸化双链DNA的1%和5%。此外，λ核酸外切酶不能从DNA的切刻或缺口处起始消化。 应用场景 单链DNA制备：通过降解双链DNA的一条链，λ核酸外切酶可用于制备单链DNA。例如，在PCR产物中，使用5′端磷酸化的引物，可以通过λ核酸外切酶特异性降解其中一条链，从而获得单链DNA。 DNA末端修饰：在某些克隆实验中，λ核酸外切酶可用于去除DNA片段的5′端核苷酸，以实现特定的末端修饰。 基因编辑：在基因编辑技术中，λ核酸外切酶可用于处理线性化质粒，以提高同源重组的效率。 DNA损伤研究：λ核酸外切酶可用于研究DNA损伤和修复机制，通过降解损伤的DNA片段来模拟细胞内的DNA修复过程。

在分子生物学实验中，DNA凝胶电泳是一种常用的技术，用于分离和分析DNA片段。

等温扩增变色检测试剂盒是一种基于环介导等温扩增（LAMP）技术的核酸检测工具，能够在恒定温度下快速扩增目标DNA，并通过颜色变化直观地判断检测结果。这种技术无需复杂的温度循环设备，操作简便，适合快速检测病原体和微生物污染。 产品特性 高灵敏度：灵敏度比传统PCR方法高2-5个数量级，检测下限可达20-200 copies/μL。 快速检测：仅需1小时即可完成反应，适合快速诊断。 可视化结果：无需电泳，通过颜色变化（如紫罗兰或蓝紫色变为天蓝色或深天蓝色）即可判断结果。 防污染设计：采用dU掺入和热敏型UDG酶技术，有效防止扩增产物污染。 应用场景 该试剂盒广泛应用于检测生物样品中的病原体、微生物污染等。例如，碧云天的BeyoColor™等温扩增变色检测试剂盒可用于检测特定病原体的感染。此外，一些试剂盒还专门用于检测支原体污染，如BeyoColor™支原体等温扩增变色检测试剂盒。 使用方法 配制反应体系：将LAMP Master Mix、引物、模板DNA、Bst DNA Polymerase等组分混合。 反应条件：在61-65℃下孵育30-60分钟。

缓冲液应保存在室温下，避免光照和污染。由于甲酰胺具有一定的挥发性，建议在使用后立即密封保存。

T7 Endonuclease I（T7EI）是一种来源于T7噬菌体的核酸内切酶，能够特异性识别并切割DNA中的错配碱基对、十字型结构DNA、Holliday结构或交叉DNA以及异源双链DNA。这种酶在基因编辑领域，尤其是CRISPR-Cas9技术中，被广泛用于检测基因突变和编辑效率。 功能与特性 错配识别：T7EI能够识别DNA中的不完全配对碱基对，并在错配位点的5'端切割第一、第二或第三个磷酸二酯键。 高特异性：该酶对特定DNA结构具有高度特异性，能够有效区分野生型和突变型DNA。 应用广泛：除了用于基因编辑效果的检测，T7EI还可用于分解四方向交叉DNA、检测或切割异源双链DNA、随机切割线性DNA进行shot-gun克隆。 在CRISPR基因编辑中的应用 在CRISPR-Cas9基因编辑中，T7EI常用于检测目标基因是否成功引入突变。具体步骤如下： PCR扩增：分别以野生型和突变型DNA为模板，扩增包含突变位点的DNA片段。 变性与退火：将PCR产物变性后退火，形成异源双链DNA。 酶切反应：加入T7EI，在37℃下反应15-30分钟，通过琼脂糖凝胶电泳检测酶切结果。

试剂盒整合了dUTP/UDG防污染系统，通过在PCR扩增产物中掺入 dUTP，有效避免了假阳性结果

Tn5转座酶是一种能够高效切割并插入DNA的酶，广泛应用于基因组编辑和高通量测序文库构建。它通过识别特定的DNA序列并将其插入到目标DNA中，实现基因组的“跳跃”和重组。 工作原理 Tn5转座酶的工作原理包括以下几个步骤： 复合物形成：两个Tn5转座酶分子结合到供体DNA的转座子的ME序列，形成复合物。 切割与插入：在Mg²⁺存在的情况下，Tn5转座酶切割供体DNA，并将其插入到靶DNA中，形成转座后的DNA序列。 结果：切割形成的9bp粘性末端可通过DNA聚合酶和连接酶填补，最终形成9bp正向重复序列。 应用场景 NGS文库构建：Tn5转座酶能够将DNA片段化并直接连接测序接头，简化了传统的文库构建步骤，显著提高了建库效率。 单细胞测序：通过LIANTI技术，Tn5转座酶可用于单细胞DNA建库，实现微量DNA的高效扩增。 ATAC-seq：用于研究染色质可及性，通过将DNA序列插入开放的染色质区域，检测全基因组范围内的染色质开放程度。 CUT&Tag：结合Protein A/G，Tn5转座酶可用于切割靶蛋白结合的染色质区域，并直接插入测序接头，用于研究蛋白质-DNA相互作用。

由于UDG在高温下仍保留部分活性，建议在反应结束后添加尿嘧啶糖基化酶抑制剂（UGI）

在分子生物学实验中，PCR技术的准确性和效率是科研人员关注的重点。Phusion Master Mix (2×) (Without Dye)以其卓越的高保真性和便捷性，成为了高精度基因扩增实验的理想选择。 Phusion Master Mix (2×) (Without Dye)是一种预配制的高浓度PCR反应体系，专为高保真DNA扩增而设计。其核心成分是Phusion DNA聚合酶，这种聚合酶融合了Pfu DNA聚合酶的高保真性和Taq DNA聚合酶的高效合成能力，能够在保证高准确性的前提下快速扩增DNA片段。Phusion酶的保真度比普通Taq酶高出约50倍，甚至比Pfu酶更高，特别适合需要高准确性的实验，如基因克隆、突变分析和长片段扩增。 Phusion Master Mix (2×) (Without Dye)的“2×”浓度设计意味着实验人员只需将模板DNA、引物和水加入其中，即可快速配制好反应体系。这种预混液不仅简化了操作流程，还减少了人为误差，确保了反应体系的均一性和稳定性。此外，无染料配方为后续实验提供了更大的灵活性。

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