6×DNA Loading Buffer是一种六倍浓缩的上样缓冲液，主要用于DNA凝胶电泳。

甲酰胺加样缓冲液(2×)是一种专为RNA电泳设计的2倍浓缩上样缓冲液，广泛应用于分子生物学实验中。它主要由去离子甲酰胺、溴酚蓝、EDTA等组成，能够为RNA电泳提供稳定的环境和清晰的指示。产品特性成分：主要由去离子甲酰胺、溴酚蓝、EDTA等组成。指示剂：以溴酚蓝为指示剂，稀释至1×后比重仍然较大，加样后易下沉，且颜色清晰可见。保存条件：2-8℃避光保存，有效期为1年。使用方法稀释：将2×甲酰胺加样缓冲液与RNA样品等比例混合，稀释至1×使用。电泳操作：将混合后的样品直接加入凝胶加样孔中，进行电泳。注意事项避免RNase污染：实验过程中需佩戴无RNase手套，避免使用可能含有RNase的耗材。个人防护：操作时需佩戴实验服和一次性手套，以确保安全。分装使用：如果每次使用量较小，建议分装后使用，避免反复冻融。用途限制：本产品仅供科研使用，不得用于临床诊断或其他非科研用途。

耐高盐全能核酸酶还被用于细胞治疗和疫苗研究，能够有效防止人外周血单核细胞（PBMC）的结团。

50×TAE液体是一种高浓度的缓冲液，广泛应用于核酸电泳实验中，特别是在琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳中。TAE是Tris-Acetate-EDTA缓冲液的缩写，其主要成分包括三羟甲基氨基甲烷（Tris base）、乙酸（acetic acid）和乙二胺四乙酸（EDTA）。产品特性高效分离：TAE缓冲液在电泳大于13 kb的DNA片段时，能够取得更好的分离效果。迁移率快：双链线状DNA在TAE缓冲液中的迁移率较其他缓冲液快约10%。适用范围广：适用于基因组DNA、大分子超螺旋DNA、大于1500 bp的RNA和DNA的电泳分离。即用型设计：50×TAE液体为浓缩液，使用时只需用去离子水稀释50倍即可。使用方法配制1×TAE工作液：取20 mL的50×TAE液体，加入980 mL去离子水，充分混匀。电泳条件：凝胶浓度：通常使用1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶。 电泳电压：建议4-10 V/cm，电泳时间根据片段大小调整。保存条件：室温保存，有效期一般为12个月。注意事项沉淀处理：如果出现沉淀，可置于37℃水浴中使其溶解，不影响使用。

二甲苯青和溴酚蓝的迁移速度不同，分别对应不同大小的 DNA 片段，可提供更准确的电泳进程指示。

Tris-硼酸电泳缓冲液(5×TBE, RNase free)是一种专为RNA电泳设计的高浓度缓冲液，经过RNase-free处理，能够有效避免RNA降解，确保电泳结果的可靠性。产品特性 成分：主要由450 mM Tris-硼酸、10 mM EDTA和DEPC处理水组成。工作液浓度：稀释5倍后得到的0.5×TBE工作液含有45 mM Tris-硼酸和1 mM EDTA，pH值约为8.0。 无RNase污染：经过DEPC处理，确保无RNase污染，适用于RNA电泳。稳定性高：室温保存，有效期长达12个月。使用方法稀释：将5×TBE缓冲液用DEPC处理水稀释5倍，制备0.5×工作液。例如：取10 mL 5×TBE，加入90 mL DEPC处理水，混匀即可。电泳操作：将稀释后的0.5×TBE缓冲液加入电泳槽中，确保缓冲液完全覆盖凝胶。加样后开始电泳，电泳条件根据实验需求调整。染色与观察：电泳结束后，使用合适的RNA染料（如EB或Goldview）染色。在紫外灯下观察RNA条带。注意事项 沉淀处理：如果出现沉淀，可置于37℃水浴中使其溶解，不影响使用。

T3 DNA连接酶通过ATP提供能量，连接双链DNA的黏性末端和平末端。

phi29 DNA Polymerase 是一种源自 Bacillus subtilis 噬菌体 phi29 的重组酶，具有极高的过程性（processivity）和链置换活性，能够在等温条件下高效扩增DNA。这种酶还具有3'→5'外切酶（校对）活性，能够确保DNA合成的高保真性。特性与优势 高过程性：phi29 DNA Polymerase 可以合成超过70 kb的长DNA片段，无需辅助蛋白。链置换活性：强大的链置换能力使其能够在等温条件下高效扩增DNA。高保真性：3'→5'外切酶活性能够实时校正错误，确保DNA复制的高准确性。等温扩增：无需复杂的温度循环，适合快速、高效的DNA扩增。应用场景phi29 DNA Polymerase 广泛应用于多种分子生物学实验：滚环扩增（RCA）：用于生成周期性DNA纳米模板，适合检测低丰度核酸。多重置换扩增（MDA）：一种等温扩增技术，能够在恒定温度下进行全基因组扩增。全基因组扩增（WGA）：用于从微量DNA样本中扩增全基因组，适用于单细胞测序。DNA模板制备：可用于测序的高质量DNA模板制备。

通常每次取5 µL加入凝胶加样孔中。如果加样孔较宽，可适当增加上样量。

核酸内切酶VIII（Endonuclease VIII，Endo VIII）是一种具有N-糖基化酶和AP-裂解酶活性的DNA损伤修复酶，广泛应用于基因损伤修复研究。其截短体则是通过基因工程改造，删除部分氨基酸序列而获得的变体，通常用于特定的研究目的，如提高酶的稳定性或特异性。 功能与特性 N-糖基化酶活性：识别并切除双链DNA上受损的嘧啶碱基，产生脱嘌呤（AP）位点。 AP-裂解酶活性：在AP位点的3'和5'端切割磷酸二酯键，产生具有3'和5'磷酸的碱基缺口。 高纯度与稳定性：核酸内切酶VIII截短体通过重组表达获得，纯度高，无核酸外切酶、核酸内切酶和RNase残留。 热失活：75℃孵育10分钟可使酶失活。 应用场景 DNA损伤修复研究：用于模拟和修复DNA损伤，特别是在氧化损伤研究中。 单细胞凝胶电泳（彗星试验）：评估细胞内和体外的氧化DNA损伤。 NGS建库：在二代测序中，特异性切除含AP位点的模板链，实现双端测序。 酶法合成DNA：释放DNA链，用于合成特定的DNA结构。

DL1000 Plus凭借其清晰的条带、高稳定性和便捷的操作，成为实验室中DNA电泳分析的理想选择

蛋白A-微球菌核酸酶（Protein A-MNase，简称pA-MNase）是一种融合蛋白，由Protein A和微球菌核酸酶（Micrococcal Nuclease，MNase）组成。它兼具Protein A的抗体结合活性和MNase的核酸内切酶活性，广泛应用于研究蛋白质与基因组DNA的相互作用。 特性与优势 高活性：pA-MNase具有高效的核酸内切酶活性，能够在短时间内将DNA降解为单核苷酸和寡核苷酸。 抗体结合能力：Protein A能够特异性结合免疫球蛋白的Fc区，使得pA-MNase可以被引导至目标蛋白所在的染色质区域。 低细胞需求量：适用于低至50个细胞的实验，尤其适合早期胚胎、干细胞和肿瘤等研究领域。 操作简便：实验流程简单，从细胞到二代测序文库的转化仅需1天。 应用场景 pA-MNase主要用于CUT&RUN（Cleavage Under Targets and Release Using Nuclease）技术，这是一种替代传统ChIP-Seq的新技术，用于研究蛋白质与基因组DNA的相互作用。

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